Duración de la viremia y la excreción fecal del virus en niños con Hepatitis A

• Autores: Munné, María Silvina; Cañero Velasco, María C.; Moreiro, Rita; Vladimirsky, Sara; Otegui, Lucio; Castro, Raúl; Brajterman, Leonardo; Soto, Sonia; Mutti, Jorge; Nucifora, Silvia; Lara, Elena; Sosa, Anibal; Godoy, Patricia; Ciocca, Mirta; Cuarterolo, Miriam; Quarleri, Jorge F.; González, Jorge E.
• Año de publicación: 2006
• Idioma: español castellano
• Tipo de recurso: artículo
• Fuente: Acta Gastroenterologica Latinoamericana, 2006, 36(4), 182–189.
• Materia: Hepatitis A; ARN; Viremia
• Institución: Administración Nacional de Laboratorios e Institutos de Salud "Dr. Carlos G. Malbrán"

La infección por el virus de hepatitis A (HAV) es endémica en Argentina. El uso de técnicas moleculares permitió extender la detección del RNA del HAV en suero y heces en pacientes con diferentes presentaciones clínicas. Comparamos la sensibilidad del protocolo de RT-PCR que usamos con cebadores dirigidos a distintas regiones del genoma, resultando la detección de la región VP3 C terminal la más sensible. Se obtuvieron prospectivamente muestras de suero y materia fecal de 20 niños con hepatitis aguda autolimitada por HAV. El RNA del HAV fue detectado en 18/20 niños en muestras basales y en 19/20 sumando una muestra posterior. El RNA del HAV fue detectable en 9/20 pacientes hasta 30 días en suero; en materia fecal en 2/20 hasta 60 días y en 1/20 hasta 90 días. La secuencia genómica para la región VP1/2A en 8 muestras demostró que todas pertenecían al subgenotipo IA, aunque eran diferentes entre sí. Solo en 1/11 niños con falla hepática fulminante fue posible la detección del RNA del HAV utilizando la región VP3 C terminal y el genotipo fue I. La reciente introducción de la vacunación universal en niños de 1 año de edad en Argentina podría disminuir drásticamente la circulación del virus emergiendo nuevas fuentes de infección y permitiendo la introducción de nuevos genotipos. Las técnicas moleculares aplicadas al estudio de la historia natural de la infección y a la vigilancia epidemiológica contribuyen al control y la toma de decisiones eficientes en políticas de Salud Pública.
Hepatitis A virus (HAV) infection is endemic in Argentina. Molecular tools have allowed HAV RNA detection to be extent to sera and feces from patients with different clinical backgrounds. We compare the sensitivity of the RT-PCR protocol we follow using primers targeting different genomic regions and VP3 C terminal was the most sensitive. Sequential sera and fecal samples were obtained from 20 children with acute self limited Hepatitis A. HAV RNA was detectable in 18/20 children if sera and stool specimens were collected at the onset of symptoms and in 19/20 if a later sample was considered. HAV RNA was detectable in serum from 9/20 patients until day 30 and in feces from 2 patients until day 60 and until day 90 in one. Genomic sequences from VP1/2A region in 8 samples showed they all belong to subgenotype IA although they were different between them. HAV RNA was detectable only in 1/11 sera from children with acute liver failure when VP3 C terminal fragment was searched and it belonged to genotype I. Universal vaccination in one year old children was recently implemented in Argentina and it will dramatically enable the decrease of the viral circulation, making new sources of infection emerge and allowing the introduction of new genotypes. The application of molecular tools to the study of the natural history of infection and to the epidemiologic surveillance may contribute to efficient control and lead to rational decisions in public health policies.
Fil: Munné, María Silvina. ANLIS Dr.C.G.Malbrán. Instituto Nacional de Enfermedades Infecciosas. Laboratorio Nacional de Referencia de Hepatitis Virales; Argentina.
Fil: Cañero Velasco, María C. Hospital Municipal del Niño de San Justo. Unidad de Gastroenterología y Hepatología; Argentina.
Fil: Moreiro, Rita. Hospital Nacional de Pediatría J. P. Garrahan. Laboratorio; Argentina.
Fil: Vladimirsky, Sara. ANLIS Dr.C.G.Malbrán. Instituto Nacional de Enfermedades Infecciosas. Laboratorio Nacional de Referencia de Hepatitis Virales; Argentina.
Fil: Otegui, Lucio. ANLIS Dr.C.G.Malbrán. Instituto Nacional de Enfermedades Infecciosas. Laboratorio Nacional de Referencia de Hepatitis Virales; Argentina.
Fil: Castro, Raúl. ANLIS Dr.C.G.Malbrán. Instituto Nacional de Enfermedades Infecciosas. Laboratorio Nacional de Referencia de Hepatitis Virales; Argentina.
Fil: Brajterman, Leonardo. ANLIS Dr.C.G.Malbrán. Instituto Nacional de Enfermedades Infecciosas. Laboratorio Nacional de Referencia de Hepatitis Virales; Argentina.
Fil: Soto, Sonia. ANLIS Dr.C.G.Malbrán. Instituto Nacional de Enfermedades Infecciosas. Laboratorio Nacional de Referencia de Hepatitis Virales; Argentina.
Fil: Mutti, Jorge. Hospital Municipal del Niño de San Justo. Unidad de Gastroenterología y Hepatología; Argentina.
Fil: Nucifora, Silvia. Hospital Municipal del Niño de San Justo. Unidad de Gastroenterología y Hepatología; Argentina.
Fil: Lara, Elena. Hospital Municipal del Niño de San Justo. Laboratorio Central; Argentina.
Fil: Sosa, Anibal. Hospital Municipal del Niño de San Justo. Laboratorio Central; Argentina.
Fil: Godoy, Patricia. Hospital Municipal del Niño de San Justo. Unidad de Gastroenterología y Hepatología; Argentina.
Fil: Ciocca, Mirta. Hospital Nacional de Pediatría J. P. Garrahan. Unidad de Hígado; Argentina.
Fil: Cuarterolo, Miriam. Hospital Nacional de Pediatría J. P. Garrahan. Unidad de Hígado; Argentina.
Fil: Quarleri, Jorge F. Facultad de Medicina. Centro Nacional de Referencia para el SIDA; Argentina.
Fil: González, Jorge E. ANLIS Dr.C.G.Malbrán. Instituto Nacional de Enfermedades Infecciosas. Laboratorio Nacional de Referencia de Hepatitis Virales; Argentina.