Regeneración de plantas de Rhabdadenia Ragonesei (Apocynaceae) por cultivo in vitro de explantes foliares

• Autores: Flachsland, Eduardo Alberto; Schinini, Aurelio; Furst, Graciela; Terada, Graciela Raquel; Mroginski, Luis Amado
• Año de publicación: 2005
• Idioma: español castellano
• Tipo de recurso: artículo
• Fuente: Bonplandia, 2005, vol. 14, no. 1-2, p. 91-96.
• Materia: Rhabdadenia Ragonesei; Apocynaceae; Iberá; Regeneración in vitro; Rhabdadenia Ragonesei; Apocynaceae; Ibera; In vitro regeneration
• Institución: Universidad Nacional del Nordeste

Fil: Flachsland, Eduardo Alberto. Universidad Nacional del Nordeste. Facultad de Ciencias Agrarias; Argentina.
Fil: Flachsland, Eduardo Alberto. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Botánica del Nordeste; Argentina.
Fil: Schinini, Aurelio. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Botánica del Nordeste; Argentina.
Fil: Terada, Graciela Raquel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Botánica del Nordeste; Argentina.
Fil: Furst, Graciela. Universidad Nacional del Nordeste. Facultad de Ciencias Agrarias; Argentina.
Fil: Mroginiski, Luis Amado. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Botánica del Nordeste; Argentina.
Se regeneraron plantas de Rhabdadenia Ragonesei Woodson (Apocynaceae) mediante el cultivo in vitro de explantes foliares en condiciones ambientales controladas. El procedimiento consistió en: 1) Desinfección de las hojas por inmersión en etanol al 70% (10 s) seguida de Inmersión en NaOCl al 1,1% (15 min) y lavado tres veces con agua destilada estéril. 2) Inducción de callos y yemas mediante el cultivo de explantes foliares en el medio de Murashige y Skoog (MS) + 3 mg/L de benciladenina (BAP). 3) Subcultivo de callos y yemas en MS + 1 mg/L de BAP y 4) Enraizamiento de los vastagos obtenidos en MS + 0,5 mg/L de ácido naftalenacético.
Plants of Rhabdadenia Ragonesei Woodson (Apocynaceae) were regenerated in vitro from leaves explants. The procedure employed includes: 1) Surface sterilization of leaves by immersion in 70% ethanol (10 s) followed by 1,1%NaOCl (15 min) and three wash with sterile distilled water. 2) Callus and buds induction by culture on Murashige and Skoog medium (MS) + 3 mg/L benzyladenine (BAP). 3) Subculture of callus and buds on MS + 1 mg/L BAP, and 4) Rooting on MS + 0.5 mg/L naftalenacetic acid.