PCR_RFLP de calpaínas en bovinos de Chaco y Corrientes

Autores
Jastrzebski, Fernando Alberto; De Biasio, María Bárbara; Sandoval, Gladis Lilia
Año de publicación
2013
Idioma
español castellano
Tipo de recurso
documento de conferencia
Estado
versión publicada
Descripción
Fil: Jastrzebski, Fernando Alberto. Universidad Nacional del Nordeste. Facultad de Ciencias Veterinarias; Argentina.
Fil: De Biasio, María Bárbara. Universidad Nacional del Nordeste. Facultad de Ciencias Veterinarias; Argentina.
Fil: Sandoval, Gladis Lilia. Universidad Nacional del Nordeste. Facultad de Ciencias Veterinarias; Argentina.
La producción de carne bovina ha estado focalizada en el incremento de la eficiencia productiva (costo/beneficio). La selección todavía no considera en forma rutinaria la información génica de rasgos relacionados con la calidad de la carne (marmóreo, terneza, etc.). La terneza se debe, en gran medida, al proceso de maduración pos-mortem realizado principalmente por dos enzimas: calpaína (CAPN) y calpastatina (CAST, inhibidora de CAPN). Las isoformas mu (ó I) y m (ó II) de calpaínas sarcoplásmicas (cisteína-proteasas) son heterodímeros con igual subunidad pequeña (regulatoria) y diferentes subunidades mayores (catalíticas, 50% homologas). Para su actividad estas isoformas de la enzima requieren de 50 pM ó 0,2 a 1 mM de calcio respectivamente; y según Taylor et al. (1995) tienen como sustratos preferenciales las bandas Z musculares, pero no atacan a la actina ni a la miosina. Goll et al. (1992) afirman que in vivo el sistema CAPN/CAST participa en el crecimiento, fusión y diferenciación de los mioblastos; mientras que post mortem CAPN es la enzima principal de los procesos de maduración de la carne y las variantes más activas de la enzima confieren mayor terneza. Factores como pH, temperatura y presencia de calcio e inhibidores influyen en su actividad, pero CAPN y CAST tienen variantes con menor o mayor actividad. Smith et al. (2000) describen que el gen de la mu-calpaína se localiza en el cromosoma 29 y, entre otros, Casas et al. (1998) y Page et al. (2002) han identificado polimorfismos asociados a la terneza en Bos taurus y Bos índicus. La selección asistida por marcadores moleculares (SAM) se basa en el rastreo de estos polimorfismos para identificar los animales con alta, media o nula predisposición para terneza. En el proyecto que enmarca este estudio se pretende contribuir al conocimiento sobre la distribución de los alelos polimórficos de calpaína presentes en los reproductores de los diferentes biotipos del ganado bovino existente en el NEA y su relación con las características carniceras que presentan. Para la genotipificación de los bovinos, se tomaron muestras de sangre de ejemplares machos de establecimientos rurales del NEA, analizando sobre cada una (n = 89), dos polimorfismos en el gen CAPN, mediante técnica de PCR-RFLP. Para la CAPN2, identificada por Zhang et al. (1996) se utilizó un par de oligonucleótidos cebadores (primers) que produjo un fragmento de 1800pb, que fue digerido por la enzima Hhal, según lo propuesto por Lara et al. (2005). Para CAPN1 316, sustitución C/G en el exón 9, descrita por Page et al. (2002) y denominada A316G (según cambio en el aminoácido Alanina por Glicina de la posición 316 de la proteína), se usó la técnica de PCR-RFLP de Soria et al. (2010), digiriendo el amplicón de 709pb con la enzima Btg I. Para CAPN1 4751, sustitución C/T en intrón 17, identificada por Casas etal. (2005), se usó la técnica de PCR_RFLP de Soria et al. (2010), digiriendo el amplicón de 215pb con la enzima BsaJI. En las poblaciones analizadas se halló hasta el presente una frecuencia de CAPN de Zhang de 0,39 y 0,61 para los alelos de carnes “tiernas” y “duras” en Chaco y de 0,12 y 0,88 respectivamente para Corrientes
Materia
Terneza de carnes
Frecuencia alélica de CAPN
Polimorfismos de nucleótido único
Nivel de accesibilidad
acceso abierto
Condiciones de uso
http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/2.5/ar/
Repositorio
Repositorio Institucional de la Universidad Nacional del Nordeste (UNNE)
Institución
Universidad Nacional del Nordeste
OAI Identificador
oai:repositorio.unne.edu.ar:123456789/52855

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Las isoformas mu (ó I) y m (ó II) de calpaínas sarcoplásmicas (cisteína-proteasas) son heterodímeros con igual subunidad pequeña (regulatoria) y diferentes subunidades mayores (catalíticas, 50% homologas). Para su actividad estas isoformas de la enzima requieren de 50 pM ó 0,2 a 1 mM de calcio respectivamente; y según Taylor et al. (1995) tienen como sustratos preferenciales las bandas Z musculares, pero no atacan a la actina ni a la miosina. Goll et al. (1992) afirman que in vivo el sistema CAPN/CAST participa en el crecimiento, fusión y diferenciación de los mioblastos; mientras que post mortem CAPN es la enzima principal de los procesos de maduración de la carne y las variantes más activas de la enzima confieren mayor terneza. Factores como pH, temperatura y presencia de calcio e inhibidores influyen en su actividad, pero CAPN y CAST tienen variantes con menor o mayor actividad. Smith et al. (2000) describen que el gen de la mu-calpaína se localiza en el cromosoma 29 y, entre otros, Casas et al. (1998) y Page et al. (2002) han identificado polimorfismos asociados a la terneza en Bos taurus y Bos índicus. La selección asistida por marcadores moleculares (SAM) se basa en el rastreo de estos polimorfismos para identificar los animales con alta, media o nula predisposición para terneza. En el proyecto que enmarca este estudio se pretende contribuir al conocimiento sobre la distribución de los alelos polimórficos de calpaína presentes en los reproductores de los diferentes biotipos del ganado bovino existente en el NEA y su relación con las características carniceras que presentan. Para la genotipificación de los bovinos, se tomaron muestras de sangre de ejemplares machos de establecimientos rurales del NEA, analizando sobre cada una (n = 89), dos polimorfismos en el gen CAPN, mediante técnica de PCR-RFLP. Para la CAPN2, identificada por Zhang et al. (1996) se utilizó un par de oligonucleótidos cebadores (primers) que produjo un fragmento de 1800pb, que fue digerido por la enzima Hhal, según lo propuesto por Lara et al. (2005). Para CAPN1 316, sustitución C/G en el exón 9, descrita por Page et al. (2002) y denominada A316G (según cambio en el aminoácido Alanina por Glicina de la posición 316 de la proteína), se usó la técnica de PCR-RFLP de Soria et al. (2010), digiriendo el amplicón de 709pb con la enzima Btg I. Para CAPN1 4751, sustitución C/T en intrón 17, identificada por Casas etal. (2005), se usó la técnica de PCR_RFLP de Soria et al. (2010), digiriendo el amplicón de 215pb con la enzima BsaJI. En las poblaciones analizadas se halló hasta el presente una frecuencia de CAPN de Zhang de 0,39 y 0,61 para los alelos de carnes “tiernas” y “duras” en Chaco y de 0,12 y 0,88 respectivamente para CorrientesUniversidad Nacional del Nordeste. 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