Surveillance of leptospiral reservoirs in synanthropic rodents using loop-mediated isothermal amplification
- Autores
- Hamer, Micaela; Saraullo, Vanina Rosa; Muschetto, Emiliano; Esteban, Micaela; Tripodi, Mariel Alejandra; Sanchez, Maria Cristina; Hancke, Diego; Suárez, Olga Virginia; Brihuega, Bibiana Felicitas; Martinez, Mara Leila
- Año de publicación
- 2025
- Idioma
- inglés
- Tipo de recurso
- artículo
- Estado
- versión publicada
- Descripción
- Leptospirosis, a zoonotic disease caused by pathogenic Leptospira spp., represents a major public health concern due to its impact on both rural and urban populations. Rodents, particularly Rattus norvegicus, Rattus rattus, and Mus musculus, are key reservoirs, excreting leptospires in their urine and contributing to environmental contamination. In this study, we evaluated the efficacy of loop-mediated isothermal amplification (LAMP), a molecular diagnostic tool, for detecting leptospiral DNA in kidney samples from captured rodents. LAMP results were compared with the standard lipL32 PCR assay. Leptospiral DNA was detected in 9.0 % (14/156) of samples, with 5.8 % positive by both LAMP and lipL32 PCR and 3.2 % positive by LAMP alone. No samples were positive by PCR and negative by LAMP. Cohen's Kappa index (0.77) indicated substantial agreement between the two methods. The higher sensitivity of LAMP, its ability to detect both pathogenic and intermediate leptospiral strains, and its cost-effectiveness make it a valuable tool for low-resource settings. However, the technique’s inability to differentiate between Leptospira species highlights the need for complementary methods for epidemiological studies. These findings contribute to the understanding of rodent leptospirosis reservoirs and offer practical diagnostic solutions for veterinary and public health surveillance.
Instituto de Patobiología
Fil: Hamer, Micaela. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patobiología Veterinaria. Laboratorio de Leptospirosis; Argentina
Fil: Hamer, Micaela. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina
Fil: Saraullo, Vanina Rosa. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patobiología Veterinaria. Laboratorio de Leptospirosis; Argentina
Fil: Saraullo, Vanina Rosa. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina
Fil: Muschetto, Emiliano. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Ecología, Genética y Evolución. Laboratorio de Ecología de Roedores Urbanos; Argentina
Fil: Muschetto, Emiliano. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina
Fil: Esteban, Micaela. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patobiología Veterinaria. Laboratorio de Leptospirosis; Argentina
Fil: Esteban, Micaela. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina
Fil: Tripodi, Mariel Alejandra. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Ecología, Genética y Evolución. Laboratorio de Ecología de Roedores Urbanos; Argentina
Fil: Tripodi, Mariel Alejandra. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina
Fil: Sanchez, Maria Cristina. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patobiología Veterinaria. Laboratorio de Leptospirosis; Argentina
Fil: Sanchez, Maria Cristina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina
Fil: Hancke, Diego. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Ecología, Genética y Evolución. Laboratorio de Ecología de Roedores Urbanos; Argentina
Fil: Hancke, Diego. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina
Fil: Suárez, Olga Virginia. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Ecología, Genética y Evolución. Laboratorio de Ecología de Roedores Urbanos; Argentina
Fil: Suárez, Olga Virginia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina
Fil: Brihuega, Bibiana Felicitas. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patobiología Veterinaria. Laboratorio de Leptospirosis; Argentina
Fil: Brihuega, Bibiana Felicitas. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina
Fil: Brihuega, Bibiana Felicitas. Universidad del Salvador. Escuela de Veterinaria; Argentina
Fil: Martinez, Mara Leila. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patobiología Veterinaria. Laboratorio de Leptospirosis; Argentina
Fil: Martinez, Mara Leila. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; Argentina
Fil: Martinez, Mara Leila. Universidad del Salvador. Escuela de Veterinaria; Argentina - Fuente
- The Veterinary Journal 311 : 106340 (June 2025)
- Materia
-
Diagnostic Techniques
Public Health
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In this study, we evaluated the efficacy of loop-mediated isothermal amplification (LAMP), a molecular diagnostic tool, for detecting leptospiral DNA in kidney samples from captured rodents. LAMP results were compared with the standard lipL32 PCR assay. Leptospiral DNA was detected in 9.0 % (14/156) of samples, with 5.8 % positive by both LAMP and lipL32 PCR and 3.2 % positive by LAMP alone. No samples were positive by PCR and negative by LAMP. Cohen's Kappa index (0.77) indicated substantial agreement between the two methods. The higher sensitivity of LAMP, its ability to detect both pathogenic and intermediate leptospiral strains, and its cost-effectiveness make it a valuable tool for low-resource settings. However, the technique’s inability to differentiate between Leptospira species highlights the need for complementary methods for epidemiological studies. These findings contribute to the understanding of rodent leptospirosis reservoirs and offer practical diagnostic solutions for veterinary and public health surveillance.Instituto de PatobiologíaFil: Hamer, Micaela. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patobiología Veterinaria. Laboratorio de Leptospirosis; ArgentinaFil: Hamer, Micaela. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Saraullo, Vanina Rosa. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA). Instituto de Patobiología Veterinaria. Laboratorio de Leptospirosis; ArgentinaFil: Saraullo, Vanina Rosa. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas; ArgentinaFil: Muschetto, Emiliano. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Ecología, Genética y Evolución. Laboratorio de Ecología de Roedores Urbanos; ArgentinaFil: Muschetto, Emiliano. 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Leptospirosis, a zoonotic disease caused by pathogenic Leptospira spp., represents a major public health concern due to its impact on both rural and urban populations. Rodents, particularly Rattus norvegicus, Rattus rattus, and Mus musculus, are key reservoirs, excreting leptospires in their urine and contributing to environmental contamination. In this study, we evaluated the efficacy of loop-mediated isothermal amplification (LAMP), a molecular diagnostic tool, for detecting leptospiral DNA in kidney samples from captured rodents. LAMP results were compared with the standard lipL32 PCR assay. Leptospiral DNA was detected in 9.0 % (14/156) of samples, with 5.8 % positive by both LAMP and lipL32 PCR and 3.2 % positive by LAMP alone. No samples were positive by PCR and negative by LAMP. Cohen's Kappa index (0.77) indicated substantial agreement between the two methods. The higher sensitivity of LAMP, its ability to detect both pathogenic and intermediate leptospiral strains, and its cost-effectiveness make it a valuable tool for low-resource settings. However, the technique’s inability to differentiate between Leptospira species highlights the need for complementary methods for epidemiological studies. These findings contribute to the understanding of rodent leptospirosis reservoirs and offer practical diagnostic solutions for veterinary and public health surveillance. |
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