Abstract:

The aim of the present work was to study whether immunocytochemical parameters present in the normal ovary were altered after tumor development under high gonadotropin levels. These results indicated that luteoma most likely develop from unruptured follicles by hypertrophy and proliferation of follicular cells. Circulating gonadotropins seem to play a fundamental role in maintaining the expression of proteins typically expressed in normal ovary, while avoiding apoptosis in this tissue.

Author affiliation: Sorianello, Eleonora Mariana. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; Argentina

Author affiliation: Fritz, S.. Technische Universitat Munchen; Alemania

Author affiliation: Beyer, C. Universitat Ulm; Alemania

Author affiliation: Hales, D. B.. University of Illinois; Estados Unidos

Author affiliation: Mayerhofer, A.. Technische Universitat Munchen; Alemania

Author affiliation: Libertun, Carlos. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Medicina; Argentina

Author affiliation: Lux, Victoria Adela R.. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; Argentina

Abstract:

GnRH has been suggested to participate in corpus luteum function. Here we studied the expression of GnRH mRNA and peptide in two models of rat luteinized tissues: ovarian cells from PMSG–hCG treated prepubertal rats (SPO) and from intrasplenic ovarian tumors (Luteoma). A GnRH autoregulatory effect was evaluated as well as its action on cell proliferation and apoptosis. GnRH mRNA was present in SPO, isolated corpora lutea from SPO and Luteoma from 1 week to 7 months of development. In vitro cultures of Luteoma cells expressed 2-fold higher GnRH mRNA and 10-fold higher GnRH peptide than SPO cells. Buserelin (GnRH analog) increased GnRH mRNA and peptide expression in SPO but not in Luteoma cells. While basal proliferation was very low in Luteoma cells, SPO cells showed a significant increase in cell number by both the thymidine and the MTS methods after 72 h in culture. Buserelin induced a decrease in cell number in both cell types to a similar degree. Although basal apoptosis levels were higher in SPO than in Luteoma cells, Buserelin-induced apoptosis was only detected in Luteoma cells after 48 h treatment. These results show that the two types of rat, luteinized tissues, Luteoma and SPO, markedly differed in some intrinsic properties and in their local GnRH systems. Luteoma cells proliferate very weakly, express and secrete high amounts of GnRH, do not show an autoregulatory effect and respond to the decapeptide with apoptosis stimulation. In contrast SPO cells proliferate significantly, secrete low levels of GnRH but possess a positive, autoregulatory mechanism and respond to GnRH stimulation with impairment of proliferation.

Author affiliation: Sorianello, Eleonora Mariana. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Medicina; Argentina

Author affiliation: Fernandez, Marina Olga. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Medicina; Argentina

Author affiliation: Catalano, Paolo Nicolás. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Medicina; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; Argentina

Author affiliation: Mongiat, Lucas Alberto. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; Argentina

Author affiliation: Somoza, Gustavo Manuel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - La Plata. Instituto de Investigaciones Biotecnológicas. Universidad Nacional de San Martín. Instituto de Investigaciones Biotecnológicas; Argentina

Author affiliation: Libertun, Carlos. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Medicina; Argentina

Author affiliation: Lux, Victoria Adela R.. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; Argentina

Abstract:

El objetivo de esta tesis fue el estudio de distintos aspectos de la biología y fisiopatología de un tumor ovárico experimental altamente luteinizado (luteoma). Se analizaron parámetros relacionados a la proliferación celular, apoptosis, capacidad de síntesis esteroidogénica y de secreción del tumor. Se halló que el luteoma se desarrollaría preferentemente por hipertrofia y proliferación de células foliculares y una marcada ausencia de apoptosis. Además se detectó la síntesis de las distintas subunidades de inhibina a lo largo de 7 meses de desarrollo tumoral; se evidenciaron patrones fluctuantes a lo largo del tiempo para las subunidades β, que correlacionan estrechamente con los niveles séricos de FSH, demostrando así que tejido altamente luteinizado es capaz de producir inhibinas. Posteriormente, se estudió el camino de señalización de un análogo superactivo del GnRH, Buserelina, en células provenientes del luteoma, evidenciando que el camino clásico de transducción de señales acoplado al receptor de GnRH se encontraba alterado y hallándose los caminos altemativos activados por el decapéptido. Por otro lado, se puso de manifiesto la expresión del mRNA y del péptido de GnRH en células del luteoma, postulándose para el mismo un papel autocrino/paracrino en dicho tejido. Finalmente, evaluamos el efecto de drogas inmunosupresoras, Ciclosporina A y Dexametasona, sobre el desarrollo del tumor in vivo en comparación con animales con operación ficticia (Sham) a lo largo de 7 semanas. Los resultados indicaron que, a pesar de ser efectiva la inmunosupresión inducida por estas drogas sobre variables inmunológicas, las mismas no afectaron el desarrollo tumoral. A diferencia de los animales portadores del tumor, en animales Sham la Ciclosporina A indujo efectos sobre varios parámetros, sugiriendo la presencia de factor/es secretado/s por el tumor que impiden o compensan algunas de las acciones de la droga. Estos estudios aportaron nuevos conocimientos acerca de caracteristicas relacionadas al desarrollo y capacidad de síntesis y secreción del luteoma, como así también de caminos de señalización del receptor de GnRH y comportamiento del tumor bajo tratamiento con drogas inmunosupresoras.

The aim of this thesis was to study different aspects regarding the biology and physiopathology of a highly luteinized experimental ovarian tumor (luteoma). Parameters related to cellular proliferation, apoptosis, steroidogenic capacity and tumor secretion were analyzed. These demonstrated that tumors develop mainly due to proliferation of follicular cells, while a marked absence of apoptosis was also observed. In addition, synthesis of inhibin subunits was detected along 7 months of tumor growth, showing fluctuating expression of B subunits along development, tightly correlating with serum FSH levels. It was thus demonstrated that highly luteinized tissue is able to produce inhibins. The signaling pathways of a superactive analog of GnRH, Buserelin, were studied in luteoma cells, showing that the classical transduction system coupled to the GnRH receptor was markedly altered and describing the alternate pathways activated by the decapeptide in luteoma cells. Moreover, the expression of the GnRH mRNA and peptide was evidenced in luteoma cells, suggesting a possible role as an autocrine/paracrine modulator. Furthermore, the effects of immunosuppressive drugs such as Cyclosporine A and Dexamethasone were evaluated on in vivo tumor growth in comparison to Sham-operated animals along 7 weeks of treatment. Results showed that even though the drug-induced immunosuppression was evidenced on immunological variables, tumor growth was not altered. Marking a difference with tumor-bearing rats, in Sham animals Cyclosporin A affected various parameters, suggesting tumor secreted factor/s which would inhibit or compensate some of the drug’s actions. These studies have contributed new understanding concerning tumor characteristics related to tumor growth, synthesis and secretion capacity as well as different signaling pathways activated by GnRH and tumor behavior under immunosuppression.

Author affiliation: Sorianello, Eleonora Mariana. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales; Argentina.

Abstract:

Previous results showed that GnRH signaling is altered in cells from rat luteinized ovarian tumors (tumor group) because it did not activate the phospholipase C pathway, in contrast to control ovarian cells from superovulated prepubertal rats (SPO). In the present work, alternate GnRH-induced second messengers such as phospholipase A(2) and phospholipase D activation, cAMP production, ERK1/2 phosphorylation, and the presence of G proteins were evaluated to determine GnRH mechanism of action in tumor cells. G proteins examined were present in both cell types. Buserelin, a GnRH agonist, (1, 10, and 100 ng/ml) increased phosphatidylethanol in SPO, indicating phospholipase D activation. Only 100 ng/ml buserelin induced a significant response in the tumor group. Buserelin (100 ng/ml) increased (3)H-arachidonic acid in culture media in SPO, indicating phospholipase A(2) activation; no effect was observed in the tumor group. Buserelin (100 and 1000 ng/ml) induced pertussis toxin-insensitive cAMP increases in both cell types, with similar potencies. In the tumor group, buserelin (100 ng/ml) inhibited human chorionic gonadotropin-induced cAMP and progesterone; this effect was protein kinase C (PKC) dependent (inhibited by GF109203X, a PKC inhibitor). Buserelin (100 and 1000 ng/ml) induced ERK1/2 phosphorylation in both cell kinds. Buserelin-induced ERK1/2 activation was G(i/0) independent and PKC dependent. Only in the tumor group, buserelin-induced ERK1/2 activation was cAMP dependent (abolished by SQ 22536, the adenylyl cyclase inhibitor). Furthermore, dibutyryl cAMP-induced ERK1/2 activation in the tumor group was PKC dependent (inhibited by GF109203X). In conclusion, activation of phospholipases in tumor cells does not seem to mediate GnRH effects. GnRH signaling seems to involve adenylyl cyclase activation, PKC stimulation, and ERK1/2 phosphorylation.

Author affiliation: Chamson de Reig, Astrid. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Medicina; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; Argentina

Author affiliation: Sorianello, Eleonora Mariana. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; Argentina

Author affiliation: Catalano, Paolo Nicolás. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; Argentina

Author affiliation: Fernandez, Marina Olga. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; Argentina

Author affiliation: Pignataro, Omar Pedro. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; Argentina

Author affiliation: Libertun, Carlos. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Medicina; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Instituto de Biología y Medicina Experimental. Fundación de Instituto de Biología y Medicina Experimental. Instituto de Biología y Medicina Experimental; Argentina

Author affiliation: Lux, Victoria Adela R.. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Medicina. Departamento de Ciencias Fisiológicas; Argentina

Abstract:

Mitochondrial dysfunction and accumulation of damaged mitochondria are considered major contributors to aging. However, the molecular mechanisms responsible for these mitochondrial alterations remain unknown. Here, we demonstrate that mitofusin 2 (Mfn2) plays a key role in the control of muscle mitochondrial damage. We show that aging is characterized by a progressive reduction in Mfn2 in mouse skeletal muscle and that skeletal muscle Mfn2 ablation in mice generates a gene signature linked to aging. Furthermore, analysis of muscle Mfn2-deficient mice revealed that aging-induced Mfn2 decrease underlies the age-related alterations in metabolic homeostasis and sarcopenia. Mfn2 deficiency reduced autophagy and impaired mitochondrial quality, which contributed to an exacerbated age-related mitochondrial dysfunction. Interestingly, aging-induced Mfn2 deficiency triggers a ROS-dependent adaptive signaling pathway through induction of HIF1α transcription factor and BNIP3. This pathway compensates for the loss of mitochondrial autophagy and minimizes mitochondrial damage. Our findings reveal that Mfn2 repression in muscle during aging is a determinant for the inhibition of mitophagy and accumulation of damaged mitochondria and triggers the induction of a mitochondrial quality control pathway.

Author affiliation: David, Sebastián. Universitat Autonoma de Barcelona; España

Author affiliation: Sorianello, Eleonora Mariana. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; Argentina. Universitat Autonoma de Barcelona; España

Author affiliation: Segalés, Jessica. Universitat Autonoma de Barcelona; España

Author affiliation: Irazoki, Andrea. IRB Barcelona; España

Author affiliation: Ruiz Bonilla, Vanessa. Universitat Pompeu Fabra; España

Author affiliation: Sala, David. Universitat Autonoma de Barcelona; España

Author affiliation: Planet, Evarist. IRB Barcelona; España

Author affiliation: Berenguer Llergo, Antoni. IRB Barcelona; España

Author affiliation: Muñoz, Juan Pablo. Universitat Autonoma de Barcelona; España

Author affiliation: Sánchez Feutrie, Manuela. Universitat Autonoma de Barcelona; España

Author affiliation: Plana, Natàlia. Universitat Autonoma de Barcelona; España

Author affiliation: Hernández Álvarez, María Isabel. Universitat Autonoma de Barcelona; España

Author affiliation: Serrano, Antonio L.. Universitat Pompeu Fabra; España

Author affiliation: Palacín, Manuel. Universitat Autonoma de Barcelona; España

Author affiliation: Zorzano, Antonio. Universitat Autonoma de Barcelona; España

Abstract:

Adaptation to hypoxia depends on a conserved α/β heterodimeric transcription factor called Hypoxia Inducible Factor (HIF), whose α-subunit is regulated by oxygen through different concurrent mechanisms. In this study, we have identified the RNA binding protein dMusashi, as a negative regulator of the fly HIF homologue Sima. Genetic interaction assays suggested that dMusashi participates of the HIF pathway, and molecular studies carried out in Drosophila cell cultures showed that dMusashi recognizes a Musashi Binding Element in the 3' UTR of the HIFα transcript, thereby mediating its translational repression in normoxia. In hypoxic conditions dMusashi is downregulated, lifting HIFα repression and contributing to trigger HIF-dependent gene expression. Analysis performed in mouse brains revealed that murine Msi1 protein physically interacts with HIF-1α transcript, suggesting that the regulation of HIF by Msi might be conserved in mammalian systems. Thus, Musashi is a novel regulator of HIF that inhibits responses to hypoxia specifically when oxygen is available.

Author affiliation: Bertolin, Agustina Paola. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; Argentina

Author affiliation: Katz, Maximiliano Javier. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; Argentina

Author affiliation: Yano, Masato. Niigata University; Japón

Author affiliation: Pozzi, María Berta. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Fisiología, Biología Molecular y Celular; Argentina

Author affiliation: Acevedo, Julieta María. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; Argentina

Author affiliation: Blanco Obregón, Dalmiro Manuel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; Argentina

Author affiliation: Gándara, Lautaro. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; Argentina

Author affiliation: Sorianello, Eleonora Mariana. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; Argentina

Author affiliation: Kanda, Hiroshi. Keio University School of Medicine; Japón

Author affiliation: Okano, Hideyuki. Keio University School of Medicine; Japón

Author affiliation: Srebrow, Anabella. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Ciudad Universitaria. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Instituto de Fisiología, Biología Molecular y Neurociencias; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Fisiología, Biología Molecular y Celular; Argentina

Author affiliation: Wappner, Pablo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Fisiología, Biología Molecular y Celular; Argentina

Abstract:

Mammalian insulin-degrading enzyme (IDE) cleaves insulin, among other peptidic substrates, but its function in insulin signaling is elusive. We use the Drosophila system to define the function of IDE in the regulation of growth and metabolism. We find that either loss or gain of function of Drosophila IDE (dIDE) can restrict growth in a cell-autonomous manner by affecting both cell size and cell number. dIDE can modulate Drosophila insulin-like peptide 2 levels, thereby restricting activation of the phosphatidylinositol-3-phosphate kinase pathway and promoting activation of Drosophila forkhead box, subgroup O transcription factor. Larvae reared in high sucrose exhibit delayed developmental timing due to insulin resistance. We find that dIDE loss of function exacerbates this phenotype and that mutants display increased levels of circulating sugar, along with augmented expression of a lipid biosynthesis marker. We propose that dIDE is a modulator of insulin signaling and that its loss of function favors insulin resistance, a hallmark of diabetes mellitus type II.

Author affiliation: Galagovsky, Diego. Fundación Instituto Leloir; Argentina

Author affiliation: Katz, Maximiliano Javier. Fundación Instituto Leloir; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquimicas de Buenos Aires; Argentina

Author affiliation: Acevedo, Julieta Maria. Fundación Instituto Leloir; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquimicas de Buenos Aires; Argentina

Author affiliation: Sorianello, Eleonora Mariana. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquimicas de Buenos Aires; Argentina. Fundación Instituto Leloir; Argentina

Author affiliation: Glavic, Alvaro. Universidad de Chile. Facultad de Ciencias. Centro FONDAP de Regulación del Genoma; Chile

Author affiliation: Wappner, Pablo. Fundación Instituto Leloir; Argentina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquimicas de Buenos Aires; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Fisiología, Biología Molecular y Celular; Argentina

Abstract:

Autophagy is an evolutionary conserved process by which eukaryotic cells undergo self-digestion of cytoplasmic components. Here we report that a novel Drosophila immunophilin, which we have named Zonda, is critically required for starvation-induced autophagy. We show that Zonda operates at early stages of the process, specifically for Vps34-mediated phosphatidylinositol 3-phosphate (PI3P) deposition. Zonda displays an even distribution under basal conditions and, soon after starvation, nucleates in endoplasmic reticulum-associated foci that colocalize with omegasome markers. Zonda nucleation depends on Atg1, Atg13, and Atg17 but does not require Vps34, Vps15, Atg6, or Atg14. Zonda interacts physically with Atg1 through its kinase domain, as well as with Atg6 and Vps34. We propose that Zonda is an early component of the autophagy cascade necessary for Vps34-dependent PI3P deposition and omegasome formation.

Author affiliation: Melani, Mariana. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; Argentina

Author affiliation: Valko, Ayelén. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; Argentina

Author affiliation: Romero, Nuria Magdalena. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; Argentina

Author affiliation: Aguilera, Milton Osmar. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Cienicas Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; Argentina

Author affiliation: Acevedo, Julieta María. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; Argentina

Author affiliation: Bhujabal, Zambarlal. The Arctic University of Norway; Noruega

Author affiliation: Perez Perri, Joel Ignacio. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; Argentina

Author affiliation: de la Riva Carrasco, Rocío Victoria. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; Argentina

Author affiliation: Katz, Maximiliano Javier. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; Argentina

Author affiliation: Sorianello, Eleonora Mariana. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; Argentina

Author affiliation: D'Alessio, Cecilia. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Fisiología, Biología Molecular y Celular; Argentina

Author affiliation: Juhász, Gabor. Hungary Institute of Genetics; Hungría

Author affiliation: Johansen, Terje. The Arctic University Of Norway; Noruega

Author affiliation: Colombo, Maria Isabel. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico Conicet - Mendoza. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos. Universidad Nacional de Cuyo. Facultad de Cienicas Médicas. Instituto de Histología y Embriología de Mendoza Dr. Mario H. Burgos; Argentina

Author affiliation: Wappner, Pablo. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Oficina de Coordinación Administrativa Parque Centenario. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires. Fundación Instituto Leloir. Instituto de Investigaciones Bioquímicas de Buenos Aires; Argentina. Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Departamento de Fisiología, Biología Molecular y Celular; Argentina